Наши контакты

Na Jarově 4, 130 00, Praha 3, Czech Republic

Телефон: +420 608 363 519
Факс: +420 266 026 243
E-mail: info@bioenzym.com
Скайп: bioenzym

Проверка эффективности препарата Sannisty , Био-Р11 DC 20 и DC 40

Характеристика препарата: см. материалы отправленные фирмой ООО «H + W s.r.o.», ул. На Слованце 1963, п/и 182 00, г. Прага 8, тел. 02/8584114

Используемые методы: Препараты были проверены в лабораторных условиях после применения их на экскрементах поросят (помет + моча), которые были отобраны в откормочной свиноферме в с. Бенатки у г. Градец Кралове (22. 04. 1997 г.). У отобранных экскрементов был определено общее содержание азота (согласно Келдалу), который составлял 95,2 м/гр. N на 10 гр. экскрементов (= 0,952 % N), из того 35,9 м/гр. N/10 гр. было в аммиачной форме, а 0,9 м/гр. N/10 гр. в нитратной форме (определена дистилляция с MgO и Dew. соединением).

1) Тестирование препарата в чашках Конвея
В чашки Конвея в течение 4 повторов было расфасовано 50 гр. экскрементов и накапано 15 мл. 0,1 N серной кислоты. Выделяющийся аммиак улавливался кислотой и определялся спектрофотометрически на автоанализаторе FIA. Тестируемые препараты перед применением были инкубированы при постоянном помешивании в течение 4 часов при температуре 28 °C в термостате (1 гр. либо 1 мл. препарата в 40 мл. воды при концентрации I и 2 гр. либо 2 мл. препарата в 40 мл. воды при концентрации II). Данная подготовленная суспензия была применена в дозе 1 мл. на поверхности экскрементов поросят, а чашка Конвея была сразу же герметично закрыта. Закрытые чашки Конвея были размещены в термостате (постоянная температура 27 °C). После 3 дней инкубации было определено количество аммиака абсорбированного серной кислотой, и после замены кислоты инкубация продолжалась следующие 4 дня, после их истечения было вновь определено количество абсорбированного аммиака.

2) Тестирование препарата на лабораторном модельном оборудовании при отслеживании волатилизации аммиака.
В притирочные литровые колбы Эрленмайера было расфасовано 200 гр. экскрементов, которые затем в течение 2 часов томились в лаборатории, а перед добавлением 4 мл. суспензии активированного препарата (подготовка такая же, как у предыдущего опыта, перед контролем было добавлено 4 мл. воды) была атмосфера в колбе продута воздухом, а колба была подключена к аппаратуре. Аппаратура состояла из расходомера и газомера, перед колбой Эрленмайера была установлена мойка с разбавленной серной кислотой, за колбой Эрленмайера находилась следующая мойка (0,01 N серная кислота) для абсорбции высвобождаемого аммиака из исследуемых экскрементов. Проток газа регулировался с помощью игольчатого клапана, расположенного перед вакуумным насосом. Отслеживалось количество аммиака, абсорбированного в разбавленной H2SO4 в продуваемом воздухе в течение 6 часов сразу после добавления препарата и в последующий второй, четвертый и седьмой день всегда после замены кислоты в мойке. Эксперименты проходили при температуре воздуха 20 – 24 °C. Анализ ионов аммония осуществлялись на проточном анализаторе FIA.

3) Микробиологические исследования тестированных препаратов
Базовая суспензия была приготовлена путем разбавления и полного гомогенизации 10 гр. препарата в 90 мл. стерильной дистиллированной воды. Из базовой суспензии был подготовлен ряд десятикратного разбавления, путем постепенного добавления 1 мл. суспензии в приготовленных образцах с 9 мл. стерильной дистиллированной воды. В приготовленные чашки Петри было накапано из каждого раствора 1 мл. суспензии всегда в двух повторах. После закапывания все чашки были заполнены подготовленными соответствующими питательными веществами (агар Торнтона для общего количества бактерий, MPA для спорообразующих бактерий, MPA растворы для олиготрофных бактерий, агар Мартина для микромицеты, агар Ашби для Азотобактерий, нитрофильные бактерии и актиномицеты) и сразу же тщательно перемешивались. После застывания чашки были оставлены для инкубации при температуре 28 °C. В инкубационных чашках Петри были подсчитаны наросшие колонии. Количество колоний было пересчитано с точки зрения разбавления на 1 гр. предоставленного образца и выражено как CFU/1 гр. образца (т.е. количество колониеобразующих единиц / 1 гр. тестируемого препарата.

Результаты экспериментов:

ad 1) Результаты тестирования препарата в чашках Конвея указаны в таблице 1 и на рис. 1. Из указанных данных выплывает, что в течение первых трех дней была волатилизация аммония при концентрации I больше всего ограничена после использования препарата Био-Р11 DC 40 и при двукратной концентрации у препарата Био-Р11 DC 20. В течение последующих 4 дней опытов была самая низкая утечка аммиака при концентрации I после применения препарата Био-Р11 DC 20 и при двукратной концентрации у препарата Sannisty. При общей оценке самым эффективным оказался препарат Био-Р11 DC 20.

ad 2) Результаты тестирования препарата при лабораторных модельных опытах, указаны в таблице 2 и на рисунках 2 – 4. Из указанных данных выплывает, что в течение первых четырех дней волатилизация аммиака была больше всего ограничена после использования препарата Био-Р11 DC 40, который снизил утечку аммиака на 41 %. В связи со значительной утечкой аммиака из мочи поросят, которая содержит больше азота, чем помет, а также в связи с постоянным сгребанием и смыванием экскрементов поросят из загонов, именно эффективность препарата в первые часы и дни после применения на свежие экскременты, являются решающим для ограничения волатилизации аммиака. При этом эффективность тестированных препаратов может быть в естественных условиях разведения животных при температуре воздуха свыше 20 °C еще больше в связи с тем, что у контролируемых вариантов на поверхность из-за методических соображений было нанесено 4 мл. воды, которая могла в первые дни опыта частично ограничить утечку аммиака. Также по организационным причинам невозможно было работать с абсолютно свежими экскрементами, которые являются самым сильным источником утечки аммиака. После окончания экспериментов у всех сравниваемых вариантов включая контроля, было определено слабое снижение содержания общего азота в экскрементах поросят, увеличение содержания азота аммония, снижение содержания нитрата азота и слабое увеличение величины pH. У вариантов с тестированными элементами пришло к ограничению запаха экскрементов. На основании результатов наших опытов, можно было бы эффективность тестированных препаратов, как правило в первые дни после применения, увеличить путем замены несущей среды (зерновые отруби) на субстрат с быстро метаболизирующим углеродом.

ad 3) Результаты микробиологического анализа тестированных препаратов указаны в таблице 3. Из указанных величин выплывает, что наибольшее количество микроорганизмов, которые могут принять участие в ограничении волатилизации аммиака, было найдено у препарата Био-Р1 и Sannisty.

Заключение:

1) На основании полученных результатов можно констатировать, что тестированные препараты Sannisty, Био-Р11 DC 20 и Био-Р11 DC 40 снижали волатилизацию аммиака в экскрементах поросят. Указанные препараты можно рекомендовать для использования в объектах разведения животных, где утечка аммиака действует неблагоприятно на здоровье животных и их продуктивность, ухудшает рабочее пространство для обслуживающего персонала и вообще негативно влияет на окружающую среду. Эффективность тестированных препаратов увеличивается с растущим содержанием азота (а именно в аммиачной форме) в экскрементах животных и с увеличивающейся температурой в объектах их разведения.

2) Из тестированных препаратов была определена самая высокая эффективность у Био-Р11 DC 20 и Био-Р11 DC 40, которые снижали утечку аммиака из экскрементов поросят на 25 – 45 %. При этом препарат Био-Р11 DC 40 был очень эффективен в первые 3 – 4 дня после применения, когда пришло к снижению волатилизации аммиака в среднем на 35 – 50 %.

3) Для дальнейшего увеличения эффективности Био-Р11 DC 20 и Sannisty, а именно в первые дни после применения, можно рекомендовать проведение экспериментов направленных на замену зерновых отрубей субстратом из слабо метаболизированного углерода, который бы позволил более высокую активность микроорганизмов после инкубации препарата и его применения в объектах разведения животных.

г. Прага, 07. 11. 1997 г.

Инж. к.н. Павел Ружек

Исследовательский институт растениеводства
Отдел питания растений
отделение агрохимии


Табл. 1

Тестированный препарат
Количество аммиака в м/гр. Н
после 3 дней инкубации после следующих 4 дней итого
(в скобках указан % эффективности)


Контроль 5,2 7,6 12,8
Sannisty I 4,1 (21 %) 5,1(33%) 9,2 (28%)
Sannisty II 3,3 (37 %) 4,5(41%) 7,8(39%)
Био-Р11 DC20 I 3,7 (29 %) 4,0(47%) 7,7(40%)
Био-Р11 DC20 II 2,2 (58 %) 4,9(36%) 7,1(45%)
Био-Р11 DC40 I 3,4 (35 %) 5,9(22%) 9,3(27%)
Био-Р11 DC40 II 3,0 (42 %) 5,1(33%) 8,1(37%)

Табл. 2


Тестированный препарат Количество аммиака в м/гр. (в скобках % эффективности)




1 день 2 день 4 день 7 день итого
Sannisty 5,1 (34%) 11,2(15%) 11,3(19%) 12,9(17%) 40,5 (19%)
Контроль 7,7 13,1 14,0 15,5 50,3
Био-Р11 DC20 1,8 (45%) 4,7 (22%) 5,1 (16%) 9,2 (26%) 20,8 (25%)
Контроль 3,3 6,0 6,1 12,5 27,9
Био-Р11 DC40 3,3 (63%) 9,8 (23%) 9,0 (42%) 16,6(9%) 38,7(31%)
Контроль 9,0 12,8 15,6 18,3

55,7

Табл. 3: Количество CFU на 1 гр. образца

Тестированный препарат общ. количество бактерий спорообразующие бактерии Азотобактерии нитрофильные бактерии олиготрофные бактерии микромицеты
Sannisty 2,07xl05 2,50x107

7,6xl07 3,0xl04
Био-Р11 DC20 1,23xl05 2,70xl05 101 – 102
7,8xl04 4,5x103
Био-Р11 DC40 l,50xl04 4,90xl04
невозможно подсчитать 4,7xl04 0
Bio-P 1 6,40x106 4,84x107
невозможно подсчитать 5,2xl06 3,5xl04


Примечание: У препаратов Sannisty и Bio-P 1 невозможно подсчитать количество мелких и средних неопределенных стержневых бактерий. Колонии каплеобразные, поверхность слизистая.

У препаратов Био-Р11 DC40 и Bio-P 1 в растворах 1 и 2 невозможно подсчитать количество крошечных невыразительных нитрофильных колоний.

Скачать статью в формате PDF (375kB)

 <-Предыдущий   Следующий-> 
 Вернуться к списку 

Опрос

О нашей продукции вы узнали: